Calculateur protéine Bradford

Ce calculateur de concentration protéique Bradford accepte l’absorbance d’échantillon corrigée du blanc ainsi que la pente et l’ordonnée à l’origine d’une courbe d’étalonnage linéaire ajustée A égale m fois C plus b, multiplie éventuellement par un facteur de dilution lorsque le puits mesuré a été dilué, et renvoie la concentration du stock avec un contrat numérique arrondi et stable. Une pente nulle, une absorbance négative et une dilution non positive échouent avec invalid_input au lieu d’inventer un titre.

Comment l’absorbance Bradford devient une concentration protéique

L’absorbance corrigée du blanc doit déjà être non négative avant l’appel API : une lecture négative signifie en général un mauvais blanc ou une mauvaise longueur d’onde, non une masse protéique négative, si bien que l’absorbance négative est rejetée plutôt qu’absolue en silence.

Contrat d’entrée, champs de réponse et règles de validation

Conservez pente et ordonnée du même ajustement, blanc, longueur d’onde et trajet optique que le puits d’échantillon ; mélanger des courbes entre instruments sans renormaliser fausse l’échelle de concentration même si l’arithmétique est correcte. Envoyez en POST un corps JSON avec trois nombres finis obligatoires et un facteur optionnel. L’absorbance obligatoire est la lecture d’échantillon corrigée du blanc—les alias incluent od, a595, sample_absorbance, abs et A—et doit être non négative. La pente obligatoire est le coefficient linéaire m non nul de A égale m fois C plus b, avec les alias m, standard_slope, curve_slope et calibration_slope ; les unités sont l’absorbance par unité de concentration et doivent correspondre à l’ajustement de l’ordonnée et des étalons. L’ordonnée obligatoire est l’ordonnée à l’origine finie b, avec les alias b, standard_intercept, curve_intercept et y_intercept ; elle peut être positive, négative ou nulle. La dilution optionnelle vaut un par défaut pour les mesures non diluées ; lorsqu’elle est présente, elle doit être un facteur de dilution fini et positif (alias dilution_factor, df, fold_dilution, dil). Exemple : absorbance zéro virgule quarante-deux, pente zéro virgule zéro trois cinq, ordonnée zéro virgule zéro cinq donne la concentration dix virgule cinq sept un quatre deux huit cinq sept un quatre deux neuf dans les unités de la courbe d’étalonnage ; la même absorbance sur une aliquote diluée cinq fois avec dilution cinq multiplie cette valeur inversée par cinq pour le stock non dilué. En cas de succès, la réponse renvoie absorbance, slope, intercept et dilution avec un arrondi stable à douze décimales, plus concentration comme résultat numérique principal, formula indiquant si la dilution était unitaire, et message comme bref résumé en anglais. Champs manquants, chaînes non finies, types booléens, absorbance négative, pente nulle et dilution non positive échouent avec invalid_input et ne sont pas facturés. Le prix du travail réussi est un $0.002 fixe avec l’unité item.

Flux de laboratoire, limites et intention de recherche de cet outil

Flux typique : exécutez des étalons BSA ou d’une autre protéine, ajustez la région linéaire pour obtenir pente et ordonnée, corrigez du blanc l’absorbance de l’échantillon, saisissez ces trois nombres, indiquez la dilution lorsque l’aliquote mesurée a été diluée, et enregistrez la concentration à côté de l’identifiant d’échantillon. Les scripts d’automatisation peuvent stocker pente et ordonnée par plaque ou par lot de kit et appeler l’API après chaque capture d’absorbance. Les contrôles aller-retour sont simples : recalculez (absorbance moins ordonnée) divisée par la pente fois la dilution et confirmez l’égalité avec concentration dans l’arrondi publié, puis confirmez qu’une pente nulle ou une absorbance négative fait passer la réponse de succès à invalid_input avec un message de champ clair.